 Your new post is loading...
Your new post is loading...
Dans une étude publiée dans Journal of Experimental Botany, des chercheurs de l’Institut Jean-Pierre Bourgin - Sciences du Végétal - IJPB (INRAE/AgroParisTech/UPSaclay, Versailles), de l’Institute for Agriculture and Forestry Systems in the Mediterranean (Catania, Italie) et des Royal Botanic Gardens - Kew, (Ardingly, Angleterre) ont étudié la biosynthèse de l’huile dans la graine de Cakile maritima, une espèce halophyte sauvage de la famille des Brassicacées. En analysant indépendamment les deux tissus zygotiques de la graine, l'embryon et l'albumen, il a été démontré que l'embryon est le principal site d'accumulation de l’huile. Il est à noter que la composition en acides gras de l’huile diffère considérablement entre les tissus zygotiques. La moitié des acides gras de l'albumen sont des monoinsaturés de type oméga-7, qui sont largement absents de l'embryon. En revanche, l'embryon présente une induction plus forte des voies de biosynthèse des acides gras de type oméga-9 et polyinsaturés, ce qui reflète une régulation spécifique des gènes du métabolisme des acides gras dans chaque tissu. En outre, les graines collectées dans différentes niches écologiques le long d'un gradient latitudinal révèlent que la température environnementale affecte la composition en acides gras de l’huile, en particulier la proportion d'acides gras polyinsaturés dans l'embryon. Ces résultats soulignent la diversité métabolique et le potentiel d'adaptation de C. maritima, dont la teneur en huile élevée des graines, associée à la capacité de la plante à prospérer dans des environnements salins avec un minimum d'apports, sont autant de caractéristiques particulièrement intéressantes dans une optique de diversification des cultures oléagineuses. -> Contact : sebastien.baud@inrae.fr
Via Life Sciences UPSaclay
Dans une étude parue dans mSystems, des scientifiques de l’Institut Jean-Pierre Bourgin - Sciences du Végétal - IJPB (INRAE/AgroParisTech/UPSaclay, Versailles) ont étudié un monde encore méconnu : la « spermosphère ». Cette interface entre la graine en germination et l’environnement comporte une large diversité chimique et microbienne, directement façonnée par les molécules issues des métabolismes central et spécialisé que la graine libère dès l’imbibition. En travaillant sur un panel de diversité génétique du haricot commun (Phaseolus vulgaris L.), les chercheurs ont analysé à la fois les métabolites libérés par les graines et les communautés de micro-organismes de la spermosphère. Ils ont découvert des métabolites exsudés par la graine, dont des acides aminés et dipeptides, des flavonoïdes et des terpènes, chacun pouvant influencer les micro-organismes qui s’installent autour de la graine. Ainsi, ils ont pu caractériser des dizaines de familles de bactéries et de champignons. Comme une véritable architecte, la graine crée donc son propre environnement, en fonction de son identité génétique et de son environnement de production. Ces échanges métaboliques entre la graine en germination et sa cohorte microbienne sont essentiels car ils contribuent à la santé et à la qualité physiologique de la future plante. Cette découverte change notre regard. Les résultats révèlent que la graine ne subit pas passivement son environnement, mais contribue activement à façonner la communauté microbienne qui l’entoure. Ces travaux ouvrent la voie à de nouvelles stratégies de sélection variétale et au développement de traitements bio-inspirés pour améliorer la vigueur des semences. Ils participent également à l’émergence de pratiques agricoles plus durables, en misant sur la compréhension fine des alliances invisibles entre graines, molécules et microbes. -> Contact : massimiliano.corso@inrae.fr / loic.rajjou@agroparistech.fr / chandrodhay.saccaram@inrae.fr
Via Life Sciences UPSaclay
La reproduction sexuée est une source majeure de diversité génétique, au cours de laquelle les chromosomes homologues (parentaux) sont alternativement associés (fécondation), puis séparés (méiose). Pour que la séparation des chromosomes en méiose soit équilibrée, les chromosomes doivent se reconnaître et s’associer en paires (bivalents). Toute perturbation de cette association peut provoquer des problèmes de stérilité ou des anomalies chromosomiques majeures. La formation des bivalents s’accompagne d’une dynamique chromosomique caractéristique, impliquant leur ancrage à l’enveloppe nucléaire et des mouvements intenses au sein du nucléoplasme. Dans une étude publiée dans Nature Plants, des scientifiques de l’Institut Jean-Pierre Bourgin - Sciences du Végétal - IJPB (INRAE/AgroParisTech/UPSaclay, Versailles) ont identifié chez Arabidopsis thaliana, le complexe protéique transmembranaire qui permet cet accrochage des chromosomes à l’enveloppe nucléaire. Ce complexe est composé de plusieurs protéines de l’enveloppe nucléaire (protéines à domaines SUN constitutives et une protéine à domaine KASH spécifique de la méiose) ainsi que d’une kinésine méiotique, susceptible d’établir un lien avec les microtubules. L’absence de chacune de ces protéines aboutit à des défauts d’attachement des chromosomes à l’enveloppe nucléaire, à une absence complète de mouvement des chromosomes, à des défauts de formation des bivalents et à une stérilité marquée des plantes. Ces défauts ont été associés à des altérations profondes de la recombinaison méiotique, caractérisées par une distribution anormale des événements de recombinaison au sein du génome. Ces résultats représentent les premières données sur le mécanisme gouvernant la dynamique des chromosomes pendant la prophase méiotique des plantes. Ils ouvrent la voie à de nouvelles investigations qui devront élucider les régulations moléculaires précises de ce processus et déterminer dans quelle mesure ces mécanismes sont conservés entre espèces. Légende Figure : Attachement défectueux des télomères dans les mutants du complexe LINC méiotique. Les télomères sont représentés par des sphères roses (lorsqu’ils sont localisés à l’enveloppe nucléaire) ou bleues (lorsqu’ils se trouvent dans le nucléoplasme). Panneau du haut : méiocytes d’A. thaliana avec immunolocalisation des axes chromosomiques (en vert et violet). Panneau central : télomères. Panneau du bas : télomères, enveloppe nucléaire (grande sphère transparente) et nucléole (petite sphère). -> Contact : mathilde.grelon@inrae.fr
Via Life Sciences UPSaclay
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
August 20, 5:09 AM
|
Legume plants form specific organs on their root system, the nitrogen-fixing nodules, thanks to a symbiotic interaction with soil bacteria collectively named rhizobia. Rhizobia however do not only induce the formation of these nodule organs, but also modulate root system architecture. In a new study published in Current Biology by the F. Frugier SILEG team, we identified in the Medicago truncatula model legume a previously unnoticed increase of the root stele diameter occurring upon rhizobium inoculation. This symbiotic root response, similarly observed in another crop legume, pea, occurs rapidly and locally after rhizobium inoculation, leading to an increased number of vascular cells. Interestingly, this root stele diameter symbiotic response requires Tracheary Element Differentiation Inhibitory Factor (TDIF) signaling peptides, and notably the MtCLE37 TDIF-encoding gene which expression is increased during nodulation, thus being referred to as symbiotic nodulation TDIF (sTDIF). Indeed, a cle37/stdif mutant is not responsive to rhizobium regarding its root stele diameter increase, and has a reduced nodule number. Combined transcriptomic and metabolomic analyses revealed that stdif has a defective primary metabolism, notably affecting carbohydrate/sugar accumulation in both roots and nodules. Remarkably, a sucrose or a malate exogenous treatment is able to rescue the rhizobium-induced stele diameter symbiotic response in stdif. This metabolic deregulation is thus instrumental in explaining the altered symbiotic response of the mutant. Overall, this study highlights a novel function of TDIF signaling peptides in legumes plants, which beyond regulating stele development, also modulate the root primary metabolism adaptations required for symbiotic nodule development. Contact: florian.frugier@cnrs.fr
|
|
Rescooped by
Saclay Plant Sciences
from Plant Sciences
June 15, 4:09 AM
|
This Summer School is organized by the Saclay Plant Sciences (SPS) network, one of the largest European plant sciences communities, and will be hosted by the cytology and imaging platform of the Institut Jean Pierre Bourgin - Plant Sciences in Versailles. Microscopy is a fundamental tool for understanding the functioning of plants at the cellular to molecular scale. Recent technological advances (super-resolution, fluorescence lifetime imaging, biosensors...) now make it possible to address new scientific questions. This Summer School will provide theoretical and practical insights into these aspects for 20 outstanding and enthusiastic PhD students or young postdoctoral researchers divided in small groups. Participants will have the opportunity to discuss the advantages and disadvantages of different modalities, sample preparation, image acquisition, and data processing throughout the week. The Summer School will include:
> A set of theoretical lectures (~9 hours) on the major issues in advanced imaging. The lectures will be given by experts in the field, who will be available for discussions during the Summer School, giving the participants an insight into the latest research findings and identifying key open questions in the field.
> A set of practical sessions (~24 hours + Restitution) to tackle real-life approaches on plant samples and compare different modalities of conventional confocal microscopy, super-resolution and fluorescence lifetime analysis. All Summer School participants will have access to all practical sessions, in groups of 3 or 4, with one (or more) expert per system. Given the advanced technologies covered, the Summer School is aimed at PhD students or young post-docs who already have practical experience in confocal microscopy. At the end of the Summer School, the experiences of all participants will be confronted in a general discussion, to expose the differences and possible advantages of the imaging technologies approached.
> Participant flash-talks and poster session (5 hours)
> Social activities This intensive and varied one-week program will allow many opportunities to discuss with speakers and fellow participants. Deadline for application: March 4, 2025 (midnight)
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
June 1, 1:39 PM
|
"Adzuki is a central legume in East Asian culinary culture, yet its domestication origin remains debated. Using ~700 accessions across Asia, we show that the initial domestication happened three to five thousand years ago in central Japan during the Jomon period, followed by a range expansion into China and secondary hybridization with Chinese wild populations. We mapped, validated, and dated key genes associated with seed coat color evolution (VaPAP1 for loss of mottled black and VaANR1 for gain of red colors). The frequency increases of variants affecting key domestication syndrome substantially predated the wild-cultigen divergence. Together, our results resolve the conflict between genetic and archaeological evidence about adzuki origins and reconstruct the evolutionary trajectory of archaeobotanically unobservable traits, consistent with a role of early weak selection during domestication"
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
May 31, 12:34 PM
|
Les plateformes omiques végétales du plateau de Saclay organisent les 23 et 24 juin 2025 un colloque dédié aux approches qu’elles développent : "Les Journées des Omiques Végétales". Ces journées, qui se dérouleront cette année pour la première fois à l'IDEEV, sont ouvertes à toutes les personnes intéressées par ces approches et les outils développés par nos plateformes. Ce colloque sera articulé autour de présentations entre le 23 juin après-midi et le 24 juin, couvrant les différentes technologies proposées par les plateformes, des projets innovants menés par des utilisateurs en collaboration avec nos plateformes et aussi les derniers développements technologiques du domaine. Une visite des Plateformes et des discussions avec leurs membres vous sont proposées le 24 juin après-midi.
Via Life Sciences UPSaclay
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
April 30, 8:24 AM
|
From the very first presentation to the final wrap-up, the workshop was a deep dive into the challenges—and opportunities—plant science faces in the changing world of today… and probably the one of tomorrow.
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
April 14, 3:54 AM
|
Kenneth D. Birnbaum (New York University, USA), Kenneth D. @KenBirnbaum
Plants have a remarkable ability to regenerate their body parts after injury. In many cases, they make a new meristem after complete loss of stem cells and unique cell types. The pattern that emerges seemingly has few guides and reestablishes without the continuity of events that happen in embryogenesis. We have been working on several systems that examine that process in Arabidopsis root regeneration. I will detail some recent work in which we follow the trajectory of cells that reprogram from one cell fate to another during the repair process. We follow cells using live microscopy and single cell RNA/ATAC-seq methods to ask about the role of cell division and chromatin reorganization. We find that division is a necessary step for complete reprogramming of cell fate but it is not the earliest step. Chromatin closing is required within hours not only to shut down old cell identities but also to moderate a potentially prohibitive stress response. This is in line with other work in the lab that shows how plants, as good as they are at regeneration, are not optimized to regenerate. Rather, they balance defense and regeneration and the two processes are not necessarily completely compatible.
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
March 11, 12:55 PM
|
As part of a collaborative study between the NUTS team from the Institute Jean-Pierre Bourgin (IJPB) and STRESS team from the Institute of Plant Sciences Paris-Saclay (IPS2), recently published in TThe Plant Journal, scientists have discovered a new signalling pathway that helps plants to acquire nitrogen, a nutrient vital for growth. The study reveals that nitrate, a form of nitrogen taken from the soil, triggers a cascade of molecular events involving specific proteins called MAP kinases. This cascade is initiated by the NLP (NIN-Like Protein) transcription factors and involves MAP3K13 and MAP3K14, two kinases whose role was poorly understood until recently. This discovery adds to our knowledge on plant adaptation to nutrient availability and could lead to strategies for improving nitrogen use efficiency in crops, reducing the use of fertilizers and promoting sustainable agriculture. IPS2 benefits from the support of Saclay Plant Sciences-SPS (ANR-17-EUR-0007)
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
February 28, 3:45 AM
|
https://www.genresj.org/index.php/grj/article/view/genresj.HNCM8135 Arabidopsis thaliana is a powerful plant model for functional biology, genetics and, more recently, population genomics. The Versailles Arabidopsis Stock Center collects, produces, preserves, characterizes and distributes various Arabidopsis biological resources. Besides large collections of mutants, including homozygous mutant lines, this stock centre offers numerous natural genotypes collected worldwide, as well as resources resulting from crosses between these variants. Most of the resources are unique and can be useful to a wide range of users, ensuring cumulative characterization of the same material over time. They are accompanied by molecular characterization, genotyping or sequencing data, enabling the analysis of diversity’s impact, particularly on complex plant traits. The collections are made easily and reliably available through an information system comprising a database and a web portal for description and distribution (https://publiclines.versailles.inrae.fr/). Several thousand seed lots are provided each year to the international scientific community.
|
La flexibilité génétique du réseau NGAL/CUC/KLUH contribue à la pléiotropie des gènes au cours du développement végétal
Dans une étude publiée dans The Plant Journal, l’équipe « Facteurs de Transcription et Architecture » de l’Institut Jean-Pierre Bourgin - Sciences du Végétal - IJPB (INRAE/AgroParisTech/UPSaclay, Versailles) s’est intéressée aux réseaux génétiques contrôlant le développement des plantes et à leur reconfiguration. La manière dont ces réseaux peuvent être modulés entre différents organes au sein d’un même organisme, en particulier pour les gènes pléiotropes exerçant plusieurs fonctions, reste encore mal comprise. Pour explorer cette question, l’équipe a étudié, par des approches génétiques et d’analyse d’expression des gènes, les interactions entre les facteurs de transcriptions NGATHA-LIKE (NGAL), CUP-SHAPED COTYLEDON (CUC) et le cytochrome P450 KLUH dans différents organes de la plante modèle Arabidopsis thaliana. Ils montrent ainsi que le module de régulation NGAL/CUC/KLUH est remanié de manière organe-spécifique. Par exemple, la régulation de la croissance dans les pétales dépend majoritairement de l’action des NGAL sur KLUH, tandis que dans les feuilles caulinaires, les gènes CUC et KLUH fonctionnent parallèlement en aval des NGAL. De façon intéressante, ces différences de dialogue génétique s’expliquent en partie par les patrons d’expression spatiale distincts des gènes CUC, KLUH et NGAL dans chaque organe, reflétant des contraintes ou des dynamiques développementales spécifiques. Ce travail met ainsi en lumière une modulation et une reconfiguration des différents réseaux génétiques associés au module NGAL/CUC/KLUH. Cette flexibilité des réseaux de régulation facilite la pléiotropie génétique et contribue à l’innovation évolutive et à la robustesse développementale chez la plante. -> Contact : patrick.laufs@inrae.fr
Via Life Sciences UPSaclay
Seed development in Arabidopsis thaliana is largely controlled by a set of transcription factors (TFs) called LAFL, including LEAFY COTYLEDON 2 (LEC2). In this study, we investigated the structure/function relationships of the protein LEC2 outside the well-described B3 DNA-binding domain. The results presented here unveil the presence of transcription activation domains (ADs) within the unstructured ends of the protein that are conserved in eudicots. Expression in both yeast and moss protoplasts of deleted and mutated versions of LEC2 confirmed the transcriptional activity of these ADs. Surprisingly, the expression of LEC2 variants lacking their ADs restored a wild-type seed phenotype in lec2 mutant, showing that these ADs are not essential for LEC2 function in seed development. Moreover, ZmAFL2/ZmABI19, a maize B3 factor related to LEC2 but deprived of N-ter AD, can also complement lec2 seed phenotype and induce abnormal vegetative development when overexpressed in Arabidopsis, supporting this observation. This work suggests that LEC2 can act both as a classical transcriptional activator or without transactivation activity, probably through its interaction with the pioneer factor LEC1. Taken together, the results provide important insights into the function of the LAFL master regulators during seed development, from cell differentiation to storage accumulation in seed.
Via Loïc Lepiniec
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
July 17, 4:17 AM
|
Les plantes dans un environnement à fort CO2 : contraintes et opportunités Ce colloque vise à dresser un état des connaissances et des enjeux de l'influence exercée par l’élévation du CO2 atmosphérique sur le monde végétal. Inscriptions à venir ! Colloque académique destiné à un public scientifique ou non scientifique éclairé. Le dérèglement climatique engendré par l’élévation du CO2 atmosphérique et autres gaz à effet de serre aggrave les contraintes abiotiques exercées sur les plantes : sécheresse, chaleur, événements climatiques extrêmes, mettant en danger leur productivité et même leur survie. Par ailleurs, et de manière singulière par rapport aux autres organismes vivants, une concentration plus élevée de CO2 stimule la croissance de la plupart des végétaux, du fait d’une photosynthèse accrue. Cet effet positif, dénommé « fertilisation CO2 », a également un impact important sur le transfert de carbone dans les sols, les plantes contribuant ainsi à l’atténuation du changement climatique. Organisé conjointement par l'Académie des sciences et l'Académie d'agriculture de France, ce colloque abordera l’état des connaissances multidisciplinaires dans ces domaines et fera la synthèse des contraintes et opportunités que représente pour les plantes et les agroécosystèmes associés une élévation du CO2 atmosphérique. Organisateurs Christophe Maurel, membre de l'Académie des sciences, directeur de recherche au CNRS, directeur de l'Institut des sciences des plantes de Montpellier (IPSiM - CNRS/Inrae/Université de Montpellier) Alain Gojon, membre correspondant de l’Académie d’agriculture de France, directeur de recherche honoraire d’Inrae, ancien directeur (2012-2020) du laboratoire de Biochimie et physiologie moléculaire des plantes (B&PMP - CNRS/Inrae/Université de Montpellier/Institut Agro), devenu l’Institut des sciences des plantes de Montpellier (IPSiM). Philippe Gate, membre de l’Académie d’agriculture de France, ex-directeur scientifique d’Arvalis-Institut du végétal (2009-2021) Intervenants (programme détaillé à venir) Marie-Odile Bancal, maître de conférences à AgroParisTech, laboratoire Écologie fonctionnelle et écotoxicologie des agroécosystèmes (Ecosys – Université Paris-Saclay/Inrae/AgroParisTech) Claire Chenu, membre correspondant de l’Académie d’agriculture de France, membre de l’Académie des technologies, directrice de recherche à Inrae, professeure consultante à AgroParisTech, laboratoire Écologie fonctionnelle et écotoxicologie des agroécosystèmes (Ecosys – Université Paris-Saclay/Inrae/AgroParisTech) Philippe Ciais, membre de l’Académie des sciences, membre de l'Académie d'agriculture de France, directeur de recherche au CEA, Laboratoire des sciences du climat et de l’environnement (LSCE - CEA/CNRS/Université Versailles Saint-Quentin-en-Yvelines) de l’Institut Pierre-Simon Laplace. Pierre Crozet, maître de conférences à Sorbonne Université, laboratoire de Biologie computationnelle, quantitative et synthétique (CQSB – CNRS/Sorbonne Université) Meije Gawinowski, chargée de recherche à Inrae, laboratoire Écologie fonctionnelle et écotoxicologie des agroécosystèmes (Ecosys – Université Paris-Saclay/Inrae/AgroParisTech) Xenie Johnson, directrice de recherche au CEA, responsable adjointe de l’équipe Photosynthèse et Environnement Nathalie Leonhardt, directrice de recherche au CEA, responsable de l’équipe Plant Environmental Physiology and Stress Signaling (PEPSS), Institut Biosciences et Biotechnologies d'Aix - Marseille (BIAM – Aix-Marseille Université/CEA/CNRS) David Makowski, directeur de recherche, Inrae/AgroParisTech/Université Paris-Saclay, Département AgroEcosystem Antoine Martin, directeur de recherche au CNRS, responsable de l’équipe Signalisation nitrate et régulation par l’environnement (Sirene), Institut des sciences des plantes de Montpellier (IPSiM – CNRS/Inrae/Université de Montpellier)
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
June 1, 1:26 PM
|
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
May 21, 7:45 AM
|
The composition of cellular proteomes rapidly adjusts in response to internal and external stimuli. Protein modifications add yet another layer of plasticity to this intricately balanced and dynamic system. In humans, N-terminal acetylation (NTA) is a pervasive and essential protein modification catalyzed by seven Nα-acetyltransferases (Nat) in a co-translational or post-translational manner. In this talk, I will summarize our efforts to characterize the plant Nat machinery and its relevance for coordinating growth and development upon diverse environmental challenges. Our findings uncovered that NTA is a phytohormone-controlled mechanism determining global proteome stability, which is particularly critical for the drought stress response of plants.
Aujourd’hui considérés comme des déchets, les sous-produits de la biomasse (notamment générés par l’agriculture et l’agroalimentaire) présentent pourtant un potentiel intéressant.
Via Agrodoc Ouest
|
|
Scooped by
Saclay Plant Sciences
April 17, 9:22 AM
|
"The ability of plants to tolerate heat stress depends on the activation of the heat stress response, a highly coordinated mechanism that drives extensive changes in gene expression. Heat stress transcription factors (HSFs) serve as the central regulators of this response, playing a crucial role in modulating thermotolerance. I will demonstrate, using tomato as a model system, how different HSFs cooperate to fine-tune the intensity and duration of the response, enabling plants to acclimate to prolonged periods of elevated temperatures. Beyond HSF-dependent transcriptional regulation, RNA splicing emerges as another key mechanism controlling gene expression under heat stress. Our findings indicate that effective thermotolerance requires both the coordinated and independent activities of transcription factors and splicing regulators. This dual-layered regulation optimizes cellular reprogramming, ensuring plant survival under high-temperature conditions".
Des analyses multi-omiques révèlent une composition et une distribution spatiale contrastées des métabolites spécialisés dans les graines de Camelina sativa et d'autres Brassicacées (IJPB, SPS)
Les graines de caméline (Camelina sativa) sont riches en huile et en acides gras d’intérêt pour la nutrition humaine et animale et différents secteurs industriels, notamment la production de biocarburant. Elles accumulent également de nombreux métabolites spécialisés (MS) jouant un rôle clé dans leurs interactions avec l’environnement. Malgré leur importance pour la qualité des graines et leur potentiel de valorisation industrielle, la distribution des MS ainsi que les protéines et gènes associés reste peu explorée dans les graines. Dans un article récemment publié dans The Plant Journal, des membres des équipes SEED-DREAM et PHYGERM, de la plateforme Chimie & Métabolisme de l’Institut Jean-Pierre Bourgin - Sciences du Végétal - IJPB (UPSaclay/INRAE/AgroParisTech, Versailles) et de la plateforme PROTEOGEN (Université de Caen Basse-Normandie) ont réalisé des analyses multi-omiques sur les tissus des graines (embryon et enveloppe & albumen) de caméline à différents stades de développement et de germination. Les analyses métabolomiques (LC-MS/MS) ont notamment révélé des différences marquées dans la composition et la distribution spatiale des glucosinolates, des composés antinutritionnels impliqués dans la réponse aux stress biotiques, chez Camelina sativa, Arabidopsis thaliana et Brassica napus. Il a été montré que la distribution des glucosinolates variait selon la longueur de leur chaîne latérale, et les analyses transcriptomiques (RNA-seq) et protéomiques (LC-MS/MS) suggèrent que leur accumulation différenciée dans les tissus pourrait être liée à des mécanismes de transport. Ces résultats offrent des connaissances précieuses pour le développement de cultures optimisées, favorisant une meilleure répartition des métabolites bénéfiques et toxiques afin d’améliorer le profil nutritionnel des graines. -> Contact : massimiliano.corso@inrae.fr / lea.barreda@inrae.fr
Via Life Sciences UPSaclay
https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/tpj.70047 Plants are essential for human survival. Over the past three decades, work with the reference plant Arabidopsis thaliana has significantly advanced plant biology research. One key event was the sequencing of its genome 25 years ago, which fostered many subsequent research technologies and datasets. Arabidopsis has been instrumental in elucidating plant-specific aspects of biology, developing research tools, and translating findings to crop improvement. It not only serves as a model for understanding plant biology and but also biology in other fields, with discoveries in Arabidopsis also having led to applications in human health, including insights into immunity, protein degradation, and circadian rhythms. Arabidopsis research has also fostered the development of tools useful for the wider biological research community, such as optogenetic systems and auxin-based degrons. This 4th Multinational Arabidopsis Steering Committee Roadmap outlines future directions, with emphasis on computational approaches, research support, translation to crops, conference accessibility, coordinated research efforts, climate change mitigation, sustainable production, and fundamental research. Arabidopsis will remain a nexus for discovery, innovation, and application, driving advances in both plant and human biology to the year 2030, and beyond.
Via Loïc Lepiniec
|
